相關(guān)介紹:
GST-瓊脂糖凝膠FF是一種將谷胱甘肽鍵合在瓊脂糖凝膠微球上形成的生物親和層析分離介質(zhì)。該產(chǎn)品保留了瓊脂糖極好的親水性及大網(wǎng)架結(jié)構(gòu),與生物活性大分子有很好的相容性,具有載量高,非特異性吸附少,流速快等特點,主要用于谷胱甘肽轉(zhuǎn)移酶標(biāo)記蛋白(GST融合蛋白)、谷胱甘肽轉(zhuǎn)移酶和谷胱甘肽依賴蛋白的分離純化。
技術(shù)指標(biāo):
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基質(zhì)
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4%高度交聯(lián)瓊脂糖凝膠
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配基
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谷胱甘肽
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配基密度
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≥10 μmol/ml
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填料粒徑
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60 ~ 180 μm
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蛋白質(zhì)載量
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約10mg谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶/mL
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最大流速
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300 cm/h
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推薦流速
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20 ~ 100 cm/h
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耐反壓
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0.3 MPa
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pH穩(wěn)定性
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3 ~ 12(長時間);3 ~ 13(短時間)
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化學(xué)穩(wěn)定性
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在以下溶液中穩(wěn)定:常用的水相緩沖液;1 M乙酸(pH 4.0);6 M鹽酸胍;70% 乙醇。
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使用方法:
1. 裝柱
1.1 根據(jù)分離目標(biāo)性質(zhì)配制初始緩沖液(平衡液)和洗脫緩沖液。
1.2 將凝膠抽干,并用蒸餾水洗滌2次去除保存的乙醇,用蒸餾水配成勻漿并脫氣。
1.3 將層析柱垂直固定,底端用水或緩沖液潤濕并保持一段液位。
1.4 用玻璃棒引導(dǎo)勻漿沿著柱內(nèi)壁一次性倒入柱內(nèi),使凝膠在柱內(nèi)自由沉降。
1.5 連結(jié)好柱子頂端活動柱頭,打開蠕動泵,讓緩沖液用使用時操作流速流過5柱體積,再使用1.5倍的操作流速流過5柱體積,調(diào)節(jié)適配柱頭,使其盡量貼近膠面,最后用2 ~ 3倍柱體積的緩沖液平衡柱子。
注意:
1)所有操作過程不能引入氣泡,保證裝膠的均勻度。
2)如無條件做1.2,填料層有氣泡,可進(jìn)行2次裝柱,去除保存的乙醇和氣泡。
3)乙醇等試劑配制的溶液需要脫氣。
2. 平衡
將平衡緩沖液以操作流速平衡層析柱,觀察檢測器的變化,直到電導(dǎo)、pH等參數(shù)不變。推薦的結(jié)合平衡緩沖液為:10 mM PBS (140 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 10 mM Na2HPO4, 1.8 mM KH2PO4, pH 7.4)。
3. 上樣
切換轉(zhuǎn)換閥進(jìn)行上樣,上樣量根據(jù)樣品的性質(zhì)和層析介質(zhì)的量進(jìn)行選擇,也可進(jìn)行線性實驗找到最佳上樣量;樣品的預(yù)處理:置換緩沖液,澄清過濾(0.45、0.22 μm)等。
4. 沖洗
用2 ~ 3個柱體積的平衡緩沖液沖洗上樣后的層析柱,觀察檢測器的變化,直到電導(dǎo)、pH等參數(shù)不變,此時未交換的組分被清洗出去。
5. 洗脫
一般推薦用10 mM還原型谷胱甘肽溶液(可含緩沖成分)進(jìn)行洗脫。推薦的洗脫緩沖液為:50 mM Tris-HCl, 10 mM 還原型谷胱甘肽(GSH), pH 8.0。
6. 再生
用蒸餾水按操作流速沖洗3 ~ 5個柱體積,接著用平衡液洗到平衡3 ~ 5個柱體積。
若有失活蛋白質(zhì)或脂類物質(zhì)在再生時洗不掉,可用在位清洗(CIP)除去。
7. 在位清洗(CIP)
去除沉淀和變性蛋白:用2 CV 6 M鹽酸胍清洗,立即用10 mM PBS(pH 7.4)洗5 CV。
去除強(qiáng)疏水蛋白:用3 ~ 4 CV 70%乙醇清洗,立即用10 mM PBS(pH 7.4)洗5 CV。
注意事項:
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推薦流速
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預(yù)裝柱體積(ml)
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1 ml
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5 ml
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10 ml
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流速(ml /min )
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0.2
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1
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2
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